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    谷物種子萌發(fā)時(shí)淀粉酶活力的測定

    放大字體  縮小字體 發(fā)布日期:2006-07-08
     
    幾乎所有植物中都存在淀粉酶,尤其是萌發(fā)的禾谷類種子,淀粉酶活性最強(qiáng)。主要是α-淀粉酶和β-淀粉酶。種子萌發(fā)時(shí),淀粉酶活性隨萌發(fā)時(shí)間迅速增加,將淀粉分解成小分子糖類,供幼苗生長。α-淀粉酶隨機(jī)水解淀粉的α-1,4-糖苷鍵,作為淀粉分解的起始酶而起主要作用;其水解產(chǎn)物為麥芽糖、麥芽三糖、糊精等還原糖;β-淀粉酶水解非還原端的第二個α-1,4-糖苷鍵,水解產(chǎn)物為麥芽糖,并能使一部分糊精糖化。本實(shí)驗(yàn)以萌發(fā)種子為材料,測定其中α-淀粉酶和β-淀粉活性的差異。
    【原理】
    兩種淀粉酶具有不同理化特性,α-淀粉酶不耐酸,在pH3.6以下迅速鈍化;β-淀酶不耐熱,在70℃下15min則被鈍化。據(jù)此,在測定時(shí)鈍化其中之一,就可以測定出另一種酶的活力,本實(shí)驗(yàn)采用加熱鈍化β-淀粉酶測出α-淀粉酶活力,再與非鈍化條件下測得的總淀粉酶活力比較,求出β-淀粉酶活力。淀粉的水解產(chǎn)物麥芽糖及其它還原糖能與3,5-二硝基水楊酸試劑反應(yīng),使其還原生成紅色3-氨基-5-硝基水楊酸。在一定范圍內(nèi),其顏色深淺與淀粉酶水解產(chǎn)物的濃度成正比,可用麥芽糖(或葡萄糖)濃度表示,用比色法測定淀粉生成的還原糖的量,以單位重量樣品在一定時(shí)間內(nèi)生成的麥芽糖的量表示酶活力。
    【儀器與用具】
    分光光度計(jì);離心機(jī);恒溫水浴;研缽;具塞刻度試管(25ml×13);刻度吸管(1ml,2ml,5ml各1支);容量瓶(50ml×2)。
    【試劑】
    麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)液(1mg/ml):稱取100mg麥芽糖,用蒸餾水溶解并定容至100ml;
    DNS試劑(3,5-二硝基水楊酸):精確稱取3,5-二硝基水楊酸1g,溶于20ml 12mol/L NaOH溶液中,加入50ml蒸餾水,再加入30g酒石酸鉀鈉,待溶解后用蒸餾水定容至100ml。蓋緊瓶塞,勿使CO2進(jìn)入。若溶液混濁可過濾后使用;
    0.1mol/L pH5.6的檸檬酸緩沖液:
    A液(0.1mol/L檸檬酸)—稱取分析純檸檬酸21.01g,用蒸餾水溶解并定容至1L;
    B液(0.1mol/L檸檬酸鈉)—稱取檸檬酸鈉29.41g用蒸餾水溶解并定容至1L;
    取A液55ml與B液145ml混勻,即為0.1mol/L pH5.6的檸檬酸緩沖液;
    1%淀粉溶液:稱取1g淀粉溶于100ml 0.1mol/L pH5.6的檸檬酸緩沖液中。
    【方法】
    1.酶液提取:稱取25℃下萌發(fā)3~4天的小麥種子1.0g(芽長1.0~1.5cm),置研缽中,加少量石英砂和2ml蒸餾水,研磨成勻漿后轉(zhuǎn)入離心管中,用7ml蒸餾水分次將殘?jiān)慈腚x心管提取液在室溫下放置提取15~20min,每隔數(shù)分鐘攪動1次,使其充分提取。然后在3000rpm轉(zhuǎn)速下離心10min,將上清液倒入50ml容量瓶中,加蒸餾水定容至刻度,搖勻,即為淀粉酶原液。吸取上述淀粉酶原液5ml,放入50ml容量瓶中,用蒸餾水定容至刻度搖勻,即為淀分酶稀釋液。
    2.麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:取7支干凈的具塞刻度試管,編號,按表33-1加入試劑。
    表33-1 制作麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)曲線配方表
    試 劑
    管 號
    1
    2
    3
    4
    5
    6
    7
    麥芽糖標(biāo)準(zhǔn)液(ml)
    0
    0.2
    0.4
    0.8
    1.2.
    1.6
    2.0
    蒸餾水(ml)
    2.0
    1.8
    1.6
    1.2
    0.8
    0.4
    0
    麥芽糖含量(mg)
    0
    0.2
    0.4
    0.8
    1.2
    1.6
    2.0
    3,5-二硝基水楊酸(ml)
    2
    2
    2
    2
    2
    2
    2
    搖勻,置沸水中浴中煮沸5min。取出后流水冷卻,加蒸餾水定容至20ml。以1號管作為空白調(diào)零點(diǎn),在540nm波長下比色測定。以麥芽糖含量為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
    3.酶活力的測定:取6支干凈的具塞刻度試管,編號,按表33-2進(jìn)行操作。
    表33-2 配活力的測定配方表
    操作項(xiàng)目
    管 號
    Ⅰ-1
    Ⅰ-2
    Ⅰ-3
    Ⅱ-1
    Ⅱ-2
    Ⅱ-3
    淀粉酶原液(ml)
    1.0
    1.0
    1.0
    0
    0
    0
    鈍化β-淀粉酶
    置70℃水浴中15min,取出后在流水中冷卻
    淀粉酶稀釋液(ml)
    0
    0
    0
    1
    1
    1
    DNS試劑(ml)
    2.0
    0
    0
    2.0
    0
    0
    預(yù)保溫
    40℃恒溫水浴中保溫10min
    1%淀粉溶液(ml)(40℃)
    1.0
    1.0
    1.0
    1.0
    1.0
    1.0
    保溫
    40℃恒溫水浴中準(zhǔn)確保溫5min
    DNS試劑(ml)
    0
    2.0
    2.0
    0
    2.0
    2.0
    搖勻,置沸水浴中5min,取出后冷卻,加蒸餾水至20ml。搖勻,在540nm波長下比色,記錄測定結(jié)果。
    4.結(jié)果計(jì)算:用Ⅰ-2、Ⅰ-3吸光度平均值與Ⅰ-1吸光度值之差,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出相應(yīng)的麥芽糖含量(mg),再按下式計(jì)算α-淀粉酶的活力(Aα),淀粉酶活性以麥芽糖mg·g﹣1·min﹣1表示:
    Aα=
    Ⅱ-2、Ⅱ-3吸光度平均值與Ⅱ-1吸光度值之差,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出相應(yīng)的麥芽糖含量(mg),按下式計(jì)算(α β)-淀粉酶總活力AT
    AT
    式中 A—淀粉酶活性,Aα為α-淀粉酶的活性,AT為淀粉酶總活性,主要是α、β淀粉酶的活性;
    Cα—α-淀粉酶水解淀粉生成的麥芽糖量(查標(biāo)準(zhǔn)曲線求值,以下同);
    CT—(α β)淀粉酶共同水解淀粉生成的麥芽糖量;
    V1—顯色所用酶液體積(ml);
    t—酶作用時(shí)間(min);
    Vt—樣液稀液總體積(α-淀粉酶為50ml,α β淀粉酶為500ml);
    FW—樣品鮮重(g)。
     
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